INGLESE

Metodiche di laboratorio utilizzate in anatomia patologica per la gestione e l’allestimento di campioni istologici e citologici; stadiazione, grading e biologia molecolare delle neoplasie; limiti ed indicazioni della citologia; metodiche molecolari utilizzate in anatomia patologica per l’identificazione di biomarcatori: Fluorescent in Situ Hybridation (FISH), Real-time PCR, Next generation sequencing (NGS), One Step Nucleic Acid Amplification (OSNA); tecnica immunoistochimica.

Robbins & Cotran: Pathologic Basis of Disease
Stevens, Lowe, Scott: Core Pathology
Lauren Pecorino: Molecular Biology of Cancer- Mechanisms, Targets, and Therapeutics. Fifth Edition

1. Conoscenza e comprensione: lo studente dovrà dimostrare di conoscere la corretta gestione di campioni citologici e istologici, la definizione di biomarcatori diagnostici, prognostici e predittivi nell’ambito di diversi tipi di neoplasie, le tecniche di biologia molecolare applicate nell’ambito dell’anatomia patologica, i principi della target-tharapy e dell’immunoterapia.
2. Capacità di applicare conoscenza e comprensione: lo studente dovrà dimostrare capacità di interpretare i risultati delle tecniche di biologia molecolare utilizzate in anatomia patologica, capacità di valutare le criticità cliniche e tecniche associate alle terapie parsonalizzate per i pazienti oncologici. 3. Autonomia di giudizio: lo studente dovrà acquisire padronanza nella conoscenza dell’utilizzo appropriato delle diverse tecniche di biologia molecolare nell’ambito della farmaco-diagnostica attualmente sviluppata nell’anatomia patologica per l’adeguata eleggibilità dei pazienti oncologici a terapie mirate.
4. Abilità comunicative lo studente dovrà padroneggiare e impiegare correttamente il lessico tecnico della disciplina.
5. Capacità di apprendimento: lo studente dovrà mostrare di aver appreso e rielaborato criticamente sia la parte del programma affrontata nel corso delle lezioni, sia la parte destinata allo studio individuale.

Conoscenze di base di biologia, istologia e genetica molecolare.

Lezioni frontali con proiezione di diapositive. Discussione interattiva sugli argomenti trattati e di casi clinici. Utilizzo di materiali digitali di supporto.

Il raggiungimento degli obiettivi dell’insegnamento è certificato mediante il superamento di un esame con valutazione espressa in trentesimi.
L’esame consiste in una prova orale che ha una durata media di 20 minuti e consiste in un colloquio articolato in: i) domande di carattere generale: per valutare la padronanza dei concetti fondamentali e l'estensione delle conoscenze acquisite; ii) approfondimenti tematici: per verificare la capacità di analisi critica e il rigore metodologico; iii) collegamenti interdisciplinari: per saggiare l'abilità dello studente nel connettere i diversi argomenti del corso in una visione d'insieme.
Criteri per l’attribuzione del voto:
<18 Non superato: lo studente non dimostra risultati coerenti con i descrittori di conoscenza e comprensione, applicazione, giudizio, comunicazione e capacità di apprendere.
18-21 Livello sufficiente: lo studente raggiunge i descrittori di base relativi alla conoscenza e comprensione dei contenuti fondamentali e mostra una prima capacità di applicazione in contesti semplici.
22-24 Livello pienamente sufficiente: lo studente soddisfa i descrittori di conoscenza e comprensione applicate, mostrando capacità di applicare concetti chiave correttamente e iniziare ad analizzare criticamente situazioni pertinenti ai temi dell’insegnamento.
25-26 Livello buono: lo studente dimostra autonomia di giudizio nel valutare e confrontare scenari pertinenti, applica conoscenze in modo efficace e comunica risultati con chiarezza, riflettendo competenze più consolidate.
27-29 Livello molto buono: lo studente soddisfa in modo avanzato i descrittori dei cinque ambiti, con padronanza dei contenuti, capacità di valutare criticamente casi complessi e abilità comunicative solide.
30 Livello eccellente: lo studente eccelle in tutti i descrittori di Dublino, con capacità di apprendere in modo continuo e creativo, conoscenza approfondita, applicazione sicura e critica, comunicazione efficace e dimostrando elevata qualità sia nella prova scritta che in quella orale.
La lode può essere attribuita quando lo studente dimostra, oltre a quanto sopra, particolare originalità, approfondimento nella discussione orale, superando le aspettative.

La frequenza alle lezioni è obbligatoria, con un massimo del 25 % di assenze consentite.
Saranno condivisi con gli studenti file pdf delle diapositive delle lezioni. Queste sono da considerarsi un supporto allo studio sui libri di testo.
Il docente è disponibile a ricevere gli studenti nel giorno indicato nella scheda didattica e su richiesta inviata via e-mail.

1.Metodiche di laboratorio utilizzate in anatomia patologica per la gestione e l’allestimento di campioni istologici e citologici: fissazione, colorazione, processazione, istochimica, immunoistochimica. Campionamento macroscopico dei diversi tumori.
2. La trasformazione neoplastica: patogenesi formale e molecolare; gli hallmarks della trasformazione neoplastica: oncogeni e oncosoppressori; controllo dell’apoptosi; la displasia; l’invasione tumorale; metastatizzazione. Le neoplasie: differenze tra neoplasia benigna e maligna. Aspetti anatomopatologici generali: stadiazione, classificazione TNM e grading dei tumori.
3. Citologia esfoliativa: scopi e tecniche. Il pap test: tecniche, scopo ed elementi di patologia. Il concetto di screening e diagnosi precoce.
4. Citologia aspirativa: scopi e tecniche. elementi di patologia in citologia tiroidea e mammaria. il concetto del rischio di malignità (ROM).
5. Terapie personalizzate: target-therapy, immunoterapia e definizione di biomarcatori predittivi su campioni fissati in formalina e inclusi in paraffina (FFPE).
6. Immunoistochimica (IHC): anticorpi monoclonali e policlonali; metodi diretti ed indiretti; immunofluorescenza; tipi di cromogeni; la doppia colorazione; sensibilità e specificità. Applicazioni dell’IHC nella pratica clinica diagnostica e nella farmaco-diagnostica.
7. Tecnica Fluorescent in Situ Hybridization (FISH): tecnica e sue applicazioni. Tipi di sonde, modelli interpretativi, FISH multiplex. Utilizzo della FISH nel carcinoma della mammella, nel carcinoma del polmone, nel carcinoma della vescica, nel carcinoma del rene.
8. Estrazione di acidi nucleici da campioni FFPE e citologici.
9. Tecniche Real-time PCR e Next Generation Sequencing (NGS): protocolli e applicazioni nella pratica clinica.
10. Utilizzo della biologia molecolare nello screening e nel monitoraggio del carcinoma della vescica.
11. Utilizzo della biologia molecolare nella pratica clinica della citologia tiroidea.
12. Esame estemporaneo mediante tecnica standard e tecnica molecolare One Step Nucleic Acid Amplification (OSNA).

English

Laboratory methods used in anatomical pathology for the management and preparation of histological and cytological samples; staging, grading and molecular biology of neoplasms; limitations and indications of cytology; molecular techniques used in anatomical pathology for biomarkers identification: Fluorescent in Situ Hybridization (FISH), Real-time PCR, Next Generation Sequencing (NGS), One Step Nucleic Acid Amplification (OSNA); immunohistochemical technique.

Robbins & Cotran: Pathologic Basis of Disease
Stevens, Lowe, Scott: Core Pathology
Lauren Pecorino: Molecular Biology of Cancer- Mechanisms, Targets, and Therapeutics. Fifth Edition

1. Knowledge and understanding: knowledge and understanding the correct management of cytological and histological samples, the definition of diagnostic, prognostic, and predictive biomarkers in various types of neoplasms, molecular biology techniques applied in the field of pathological anatomy, as well as the principles of targeted therapy and immunotherapy.
2. Application of knowledge and understanding: the student will need to demonstrate the ability to interpret the results of molecular biology techniques used in anatomic pathology, as well as the ability to assess the clinical and technical critical issues associated with personalized therapies for oncological patients.
3. Autonomy of judgement: the student will need to acquire proficiency in the knowledge of the appropriate use of various molecular biology techniques within the field of pharmacodiagnostics, which is currently developed in pathology, to ensure the proper eligibility of oncological patients for targeted therapies.
4. Communication skills: a clear command and appropriate use of the technical language of the discipline
5. Learning skills: sufficient understanding of subject matters explained during classes and ability to learn and re-elaborate the part of the program for the individual study.

Basic knowledge about biology, histology and molecular genetics.

Frontal lessons with slides. Interactive discussions on the topics covered and clinical cases. Use of digital support materials.

Achievement of the course learning objectives is certified through passing an exam, graded on a scale of thirty (30).
The exam consists of an oral test that has an average duration of 20 minutes and consists of an interview structured as follows: i) general questions, to assess the student's command of fundamental concepts and the breadth of the knowledge acquired; ii) in-depth thematic questions, to verify the student's ability for critical analysis and methodological rigor; iii) interdisciplinary connections, to test the student's ability to link the different topics of the course into an overall view.
Grading criteria:
<18 Fail: the student does not demonstrate results consistent with the descriptors of knowledge and understanding, application, judgement, communication, and learning skills.
18–21 Sufficient level: the student meets the basic descriptors relating to knowledge and understanding of the fundamental content and shows an initial ability to apply it in simple contexts.
22–24 Fully sufficient level: the student meets the descriptors of applied knowledge and understanding, showing the ability to correctly apply key concepts and beginning to critically analyze situations relevant to the course topics.
25–26 Good level: the student demonstrates independent judgement in evaluating and comparing relevant scenarios, applies knowledge effectively, and communicates results clearly, reflecting more consolidated competences.
27–29 Very good level: the student meets the descriptors of all five areas at an advanced level, with mastery of the content, the ability to critically evaluate complex cases, and strong communication skills.
30 Excellent level: the student excels in all the Dublin descriptors, demonstrating the ability to learn continuously and creatively, comprehensive knowledge and understanding, confident and critical application of knowledge, and effective communication skills, while achieving an outstanding standard in both the written and oral examinations.
Honours (cum laude) may be awarded when, in addition to the above, the student demonstrates exceptional originality, depth of analysis in the oral discussion, and performance that exceeds expectations.

Attendance is mandatory, with a maximum of 25% of allowed absences.
PDF files of the lesson slides will be made available to students. These materials are intended as study aids to complement the recommended textbooks and should not be considered a substitute for them.
The teacher is available to receive students on the day indicated on the teaching form and on request sent by e-mail.

1. Laboratory methods used in anatomical pathology for the management and preparation of histological and cytological samples: fixation, painting, processation, istochemical and immunoistochemical techniques. Macroscopic sampling of different tumors.
2. Neoplastic transformation: formal and molecular pathogenesis; the hallmarks of neoplastic transformation: oncogenes and tumor suppressor genes; control of apoptosis; dysplasia; tumor invasion; metastasis. Neoplasms: differences between benign and malignant neoplasia. General histopathological aspects: staging, TNM classification, and tumor grading.
3. Exfoliative cytology: purposes and techniques. The Pap test: techniques, purpose, and pathological elements. The concept of screening and early diagnosis.
4. Fine-needle aspiration cytology: purposes and techniques. Pathological elements in thyroid and breast cytology. The concept of the risk of malignancy (ROM).
5. Personalized therapies: targeted therapy, immunotherapy, and the definition of predictive biomarkers on formalin-fixed, paraffin-embedded (FFPE) samples.
6. Immunohistochemistry (IHC): monoclonal and polyclonal antibodies; direct and indirect methods; immunofluorescence; types of chromogens; double staining; sensitivit and specificity. Applications of IHC in clinical diagnostic practice and pharmaco-diagnosis.
7. Fluorescent in Situ Hybridization (FISH) technique and its applications. Types of probes, interpretative models, multiplex FISH. Use of FISH in breast carcinoma, lung carcinoma, bladder carcinoma, and kidney carcinoma.
8. Extraction of nucleic acids from FFPE and cytological samples
9. Real-time PCR and Next Generation Sequencing (NGS) techniques: protocols and applications in clinical practice.
10. Use of molecular biology in screening and monitoring of bladder carcinoma.
11. Use of molecular biology in the clinical practice of thyroid cytology.
12. Intraoperative examination using standard technique and molecular technique One Step Nucleic Acid Amplification (OSNA).